Опыт применения метода полимеразной цепной реакции для диагностики кори в Российской Федерации
https://doi.org/10.51793/OS.2024.27.11.011
Аннотация
Введение. Эпидемическая ситуация по кори как в России, так и в мире делает чрезвычайно актуальным вопрос внедрения в диагностику высокочувствительных молекулярных методов, таких как полимеразная цепная реакция, в дополнение к существующим серологическим. В данной работе описан опыт применения метода полимеразной цепной реакции для диагностики кори в Российской Федерации на примере Республики Дагестан.
Цель работы. Раннее определение вируса кори высокочувствительным методом полимеразной цепной реакции в различных типах биоматериала.
Материалы и методы. Исследование проведено методом полимеразной цепной реакции на образцах биоматериала от 208 пациентов с диагнозом «корь» и 30 условно здоровых добровольцев контрольной группы. Диагноз «корь» был установлен на основании совокупности клинических проявлений и подтвержден результатами лабораторного тестирования с выявлением антител класса IgM методом иммуноферментного анализа.
Результаты. У пациентов, госпитализированных до появления сыпи и в течение 4 дней с момента ее появления, результаты полимеразной цепной реакции на РНК вируса кори были положительными. Вирусная нагрузка в образцах мочи и мазках из носо- и ротоглотки составила 103-109 ГЭ/мл, из них в 67,5% случаев – 106-109 ГЭ/мл; в то время как в сыворотке крови регистрировалось гораздо меньшее количество вирусной РНК – 103-105 ГЭ/мл.
Заключение. Показана возможность раннего определения кори методом полимеразной цепной реакции, что позволит улучшить процесс дифференциальной диагностики заболеваний, имеющих сходную клиническую картину, при внедрении ПЦР-тестов на корь в практическое здравоохранение. Данный подход предполагает тестирование не только заболевших, но и контактных лиц.
Об авторах
Т. Л. ЗамотаеваРоссия
Замотаева Татьяна Львовна, научный сотрудник Центра разработки, развития продукции и инноваций
111123, Москва, ул. Новогиреевская, 3а
Е. А. Черкашин
Россия
Черкашин Евгений Александрович, к.х.н., руководитель Центра разработки, развития продукции и инноваций
111123, Москва, ул. Новогиреевская, 3а
М. А. Ниналалов
Россия
Ниналалов Магомед Абдулжалилович, инфекционист, заведующий отделением № 2
367008, Махачкала, ул. Гоголя, 43
Ж. Б. Понежева
Россия
Понежева Жанна Бетовна, д.м.н., заведующая клиническим отделом инфекционной патологии
111123, Москва, ул. Новогиреевская, 3а
В. Г. Акимкин
Россия
Акимкин Василий Геннадьевич, д.м.н., профессор, академик РАН, директор
111123, Москва, ул. Новогиреевская, 3а
Список литературы
1. Minta A., Ferrari M., Antoni S. Progress Toward Measles Elimination – Worldwide, 2000-2022. MMWR. 2023; 72 (46): 1262–1268.
2. United Nations High Commissioner for Refugees (UNHCR). Available at: www.un.org/ru/global-issues/refugees. Accessed June 2024.
3. Measles and rubella monthly update – WHO European Region – April 2024. Available at: www.who.int/europe/publications/m/item/measles-andrubella-monthly-update---who-european-region---april-2024. Accessed June 2024.
4. Rota P., Moss W., Takeda M. Measles. Nat Rev Dis Primers. 2016; 2: 16049- 16049. DOI: 10.1038/nrdp.2016.49.
5. The World Health Organization. Manual for the laboratory diagnosis of measles and rubella virus infection. 2nd ed. No. WHO/IVB/07.01; 2007.
6. Санитарно-эпидемиологические правила СП 3.1.2952-11 «Профилактика кори, краснухи, эпидемического паротита» (утв. постановлением Главного государственного санитарного врача РФ от 28 июля 2011 г. N 108
7. Мамаева Т. А., Железнова Н. В., Наумова М. А. и соавт. Алгоритм лабораторного подтверждения и дифференциальной диагностики коревой инфекции в период элиминации кори в Российской Федерации. Инфекция и иммунитет. 2015; 5 (1): 55-62. DOI: 10.15789/2220-7619-2015-1-55-62.
8. Генетический мониторинг циркуляции вирусов кори и краснухи: методические рекомендации (МР 3.1.2.0135-18). М.: Федеральная служба по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, 2019.
9. Hummel K., Lowe L., Bellini W., Rota P. Development of quantitative genespecific real-time RT-PCR assays for the detection of measles virus in clinical specimens. J Virol Methods. 2006; 132 (1-2): 166-173. DOI: 10.1016/j.jviromet.2005.10.006.
10. Michel Y., Saloum K., Tournier K. Rapid molecular diagnosis of measles virus infection in an epidemic setting. J Med Virol. 2013; 85 (4): 723-30. DOI: 10.1002/jmv.23515.
11. Lin W. H. W., Kouyos R. D., Adams R. J. Prolonged persistence of measles virus RNA is characteristic of primary infection dynamics. Proc Natl Acad Sci USA. 2012; 109 (37): 14989-14994. DOI: 10.1073/pnas.1211138109.
Рецензия
Для цитирования:
Замотаева Т.Л., Черкашин Е.А., Ниналалов М.А., Понежева Ж.Б., Акимкин В.Г. Опыт применения метода полимеразной цепной реакции для диагностики кори в Российской Федерации. Лечащий Врач. 2024;(11):65-69. https://doi.org/10.51793/OS.2024.27.11.011
For citation:
Zamotaeva T.L., Cherkashin E.A., Ninalalov M.A., Ponezheva Zh.B., Akimkin V.G. Experience in using the polymerase chain reaction method for diagnosis of measles in the Russian Federation. Lechaschi Vrach. 2024;(11):65-69. (In Russ.) https://doi.org/10.51793/OS.2024.27.11.011
JATS XML



















